Montag, Februar 28 2011 20: 21

Organische Lösungsmittel

Artikel bewerten
(1 Vote)

Einleitung

Organische Lösungsmittel sind flüchtig und im Allgemeinen in Körperfett löslich (lipophil), obwohl einige von ihnen, z. B. Methanol und Aceton, auch wasserlöslich (hydrophil) sind. Sie wurden nicht nur in der Industrie, sondern auch in Konsumgütern wie Farben, Tinten, Verdünnern, Entfettern, Trockenreinigungsmitteln, Fleckenentfernern, Abwehrmitteln und so weiter in großem Umfang eingesetzt. Obwohl es möglich ist, ein biologisches Monitoring anzuwenden, um gesundheitliche Auswirkungen zu erkennen, z. B. Auswirkungen auf die Leber und die Niere, zum Zwecke der Gesundheitsüberwachung von Arbeitnehmern, die beruflich organischen Lösungsmitteln ausgesetzt sind, ist es am besten, stattdessen ein biologisches Monitoring zu verwenden für „ „Exposition“-Überwachung, um die Gesundheit der Arbeitnehmer vor der Toxizität dieser Lösungsmittel zu schützen, da dies ein Ansatz ist, der sensibel genug ist, um Warnungen auszusprechen, lange bevor gesundheitliche Auswirkungen auftreten können. Das Screening von Arbeitnehmern auf eine hohe Empfindlichkeit gegenüber Lösungsmitteltoxizität kann ebenfalls zum Schutz ihrer Gesundheit beitragen.

Zusammenfassung der Toxikokinetik

Organische Lösungsmittel sind im Allgemeinen unter Standardbedingungen flüchtig, obwohl die Flüchtigkeit von Lösungsmittel zu Lösungsmittel unterschiedlich ist. Daher ist der Hauptexpositionsweg in industriellen Umgebungen die Inhalation. Die Absorptionsrate durch die Alveolarwand der Lunge ist viel höher als die durch die Wand des Verdauungstrakts, und eine Lungenabsorptionsrate von etwa 50 % wird als typisch für viele gebräuchliche Lösungsmittel wie Toluol angesehen. Einige Lösungsmittel, z. B. Schwefelkohlenstoff und N,N-Dimethylformamid, können in flüssigem Zustand in so großen Mengen intakte menschliche Haut durchdringen, dass sie toxisch wirken.

Bei der Aufnahme dieser Lösungsmittel wird ein Teil ohne Biotransformation über die Atemluft ausgeatmet, der größere Teil jedoch aufgrund ihrer Lipophilie in lipidreichen Organen und Geweben verteilt. Die Biotransformation findet hauptsächlich in der Leber statt (und in geringem Umfang auch in anderen Organen), und das Lösungsmittelmolekül wird hydrophiler, typischerweise durch einen Oxidationsprozess mit anschließender Konjugation, um als Metabolit(e) über die Niere in den Urin ausgeschieden zu werden ). Ein kleiner Teil kann unverändert mit dem Urin ausgeschieden werden.

Somit stehen aus praktischer Sicht drei biologische Materialien, Urin, Blut und Atemluft, für die Expositionsüberwachung von Lösungsmitteln zur Verfügung. Ein weiterer wichtiger Faktor bei der Auswahl biologischer Materialien für die Expositionsüberwachung ist die Geschwindigkeit des Verschwindens der absorbierten Substanz, für die die biologische Halbwertszeit oder die Zeit, die eine Substanz benötigt, um auf die Hälfte ihrer ursprünglichen Konzentration abzunehmen, ein quantitativer Parameter ist. Beispielsweise verschwinden Lösungsmittel viel schneller aus der ausgeatmeten Luft als entsprechende Metaboliten aus dem Urin, was bedeutet, dass sie eine viel kürzere Halbwertszeit haben. Innerhalb von Metaboliten im Urin variiert die biologische Halbwertszeit in Abhängigkeit davon, wie schnell die Ausgangsverbindung metabolisiert wird, so dass die Probenahmezeit in Bezug auf die Exposition oft von entscheidender Bedeutung ist (siehe unten). Eine dritte Überlegung bei der Auswahl eines biologischen Materials ist die Spezifität der zu analysierenden Zielchemikalie in Bezug auf die Exposition. Beispielsweise ist Hippursäure ein seit langem verwendeter Marker für Toluol-Exposition, aber sie wird nicht nur auf natürliche Weise vom Körper gebildet, sondern kann auch aus nicht-beruflichen Quellen wie einigen Lebensmittelzusatzstoffen stammen und gilt nicht mehr als zuverlässig Markierung, wenn die Toluolbelastung gering ist (weniger als 50 cm3/m3). Im Allgemeinen wurden Metaboliten im Urin am häufigsten als Indikatoren für die Exposition gegenüber verschiedenen organischen Lösungsmitteln verwendet. Lösungsmittel im Blut wird als qualitatives Expositionsmaß analysiert, da es normalerweise kürzer im Blut verbleibt und eher eine akute Exposition widerspiegelt, während Lösungsmittel in der Ausatemluft zur Abschätzung der durchschnittlichen Exposition schwierig zu verwenden ist, da die Konzentration in der Atemluft so abnimmt schnell nach Beendigung der Exposition. Lösungsmittel im Urin ist ein vielversprechender Kandidat als Expositionsmaß, bedarf jedoch weiterer Validierung.

Biologische Expositionstests für organische Lösungsmittel

Bei der Anwendung der biologischen Überwachung auf Lösungsmittelexposition ist die Probenahmezeit wichtig, wie oben angegeben. Tabelle 1 zeigt empfohlene Probenahmezeiten für gängige Lösungsmittel bei der Überwachung der täglichen beruflichen Exposition. Wenn das Lösungsmittel selbst analysiert werden soll, sollte darauf geachtet werden, dass ein möglicher Verlust (z. B. Verdunstung in die Raumluft) sowie eine Kontamination (z. B. Auflösen aus der Raumluft in die Probe) während des Probenhandhabungsprozesses verhindert werden. Falls die Proben zu einem entfernten Labor transportiert oder vor der Analyse gelagert werden müssen, ist darauf zu achten, dass sie nicht verloren gehen. Für Metaboliten wird das Einfrieren empfohlen, während für die Analyse des Lösungsmittels selbst eine Kühlung (aber kein Einfrieren) in einem luftdichten Behälter ohne Luftraum (oder besser noch in einem Headspace-Fläschchen) empfohlen wird. In der chemischen Analytik ist die Qualitätskontrolle für verlässliche Ergebnisse unerlässlich (Details siehe Artikel „Qualitätssicherung“ in diesem Kapitel). Bei der Berichterstattung über die Ergebnisse sollte die Ethik respektiert werden (siehe Kapitel Ethische Fragen anderswo in der Enzyklopädie).

Tabelle 1. Einige Beispiele für Zielchemikalien für die biologische Überwachung und Probenahmezeit

Lösungsmittel

Zielchemikalie

Urin/Blut

Abtastzeit1

Schwefelkohlenstoff

2-Thiothiazolidin-4-carbonsäure

Urin

D F

N,N-Dimethylformamid

N-Methylformamid

Urin

M Di W Do F

2-Ethoxyethanol und sein Acetat

Ethoxyessigsäure

Urin

Do F (Ende der letzten Schicht)

Hexane

2,4-Hexandion

Hexane

Urin

Blut

M Di W Do F

Bestätigung der Exposition

Methanol

Methanol

Urin

M Di W Do F

Styrol

Mandelsäure

Phenylglyoxylsäure

Styrol

Urin

Urin

Blut

D F

D F

Bestätigung der Exposition

Toluol

Hippursäure

o-Kresol

Toluol

Toluol

Urin

Urin

Blut

Urin

Tu W Do F

Tu W Do F

Bestätigung der Exposition

Tu W Do F

Trichlorethylen

Trichloressigsäure

(TCA)

Gesamttrichlorverbindungen (Summe aus TCA und freiem und konjugiertem Trichlorethanol)

Trichlorethylen

Urin

Urin

Blut

D F

D F

Bestätigung der Exposition

Xylole2

Methylhippursäuren

Xylole

Urin

Blut

Tu W Do F

Tu W Do F

1 Ende der Arbeitsschicht, sofern nicht anders angegeben: Wochentage geben bevorzugte Probenahmetage an.
2 Drei Isomere, entweder einzeln oder in beliebiger Kombination.

Quelle: Zusammengefasst aus WHO 1996.

 

Für viele Lösungsmittel sind eine Reihe analytischer Verfahren etabliert. Die Methoden variieren je nach Zielchemikalie, aber die meisten der kürzlich entwickelten Methoden verwenden Gaschromatographie (GC) oder Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) zur Trennung. Für eine gute Qualitätskontrolle bei der chemischen Analyse wird die Verwendung eines Autosamplers und Datenprozessors empfohlen. Wenn ein Lösungsmittel selbst im Blut oder im Urin analysiert werden soll, ist eine Anwendung der Headspace-Technik in der GC (Headspace-GC) sehr praktisch, insbesondere wenn das Lösungsmittel flüchtig genug ist. Tabelle 2 zeigt einige Beispiele für etablierte Methoden für gängige Lösungsmittel.

Tabelle 2. Einige Beispiele für Analysemethoden zur biologischen Überwachung der Exposition gegenüber organischen Lösungsmitteln

Lösungsmittel

Zielchemikalie

Blut/Urin

Analytische Methode

Schwefelkohlenstoff

2-Thiothiazolidin-4-
Carbonsäure

Urin

Hochleistungs-Flüssigkeitschromatograph mit UV-Detektion

(UV-HPLC)

N, N-Dimethylformamid

N-Methylformamid

Urin

Gaschromatograph mit flammenthermionischer Detektion (FTD-GC)

2-Ethoxyethanol und sein Acetat

Ethoxyessigsäure

Urin

Extraktion, Derivatisierung und Gaschromatograph mit Flammenionisationsdetektion (FID-GC)

Hexane

2,4-Hexandion

Hexane

Urin

Blut

Extraktion, (Hydrolyse) und FID-GC

Headspace-FID-GC

Methanol

Methanol

Urin

Headspace-FID-GC

Styrol

Mandelsäure

Phenylglyoxylsäure

Styrol

Urin

Urin

Blut

Entsalzung und UV-HPLC

Entsalzung und UV-HPLC

Headspace-FID-GC

Toluol

Hippursäure

o-Kresol

Toluol

Toluol

Urin

Urin

Blut

Urin

Entsalzung und UV-HPLC

Hydrolyse, Extraktion und FID-GC

Headspace-FID-GC

Headspace-FID-GC

Trichlorethylen

Trichloressigsäure
(TCA)

Gesamttrichlorverbindungen (Summe aus TCA und freiem und konjugiertem Trichlorethanol)

Trichlorethylen

Urin

Urin

Blut

Kolorimetrie oder Veresterung und Gaschromatograph mit Elektroneneinfangdetektion (ECD-GC)

Oxidation und Kolorimetrie oder Hydrolyse, Oxidation, Veresterung und ECD-GC

Headspace-ECD-GC

Xylole

Methylhippursäuren (drei Isomere, entweder einzeln oder in Kombination)

Urin

Headspace-FID-GC

Quelle: Zusammengefasst aus WHO 1996.

Evaluierung

Eine lineare Beziehung der Expositionsindikatoren (aufgeführt in Tabelle 2) mit der Intensität der Exposition gegenüber entsprechenden Lösungsmitteln kann entweder durch eine Befragung von Arbeitern, die beruflich gegenüber Lösungsmitteln exponiert sind, oder durch experimentelle Exposition von menschlichen Probanden hergestellt werden. Dementsprechend haben zB die ACGIH (1994) und die DFG (1994) den biologischen Expositionsindex (BEI) bzw. den biologischen Toleranzwert (BAT) als den beruflichen äquivalenten Werten in den biologischen Proben festgelegt Expositionsgrenzwerte für luftgetragene Chemikalien, dh Schwellenwert (TLV) bzw. maximale Arbeitsplatzkonzentration (MAK). Es ist jedoch bekannt, dass die Konzentration der Zielchemikalie in Proben, die von nicht exponierten Personen entnommen wurden, variieren kann, was beispielsweise lokale Gepflogenheiten (z. B. Lebensmittel) widerspiegelt, und dass ethnische Unterschiede im Lösungsmittelstoffwechsel bestehen können. Es ist daher wünschenswert, Grenzwerte durch die Untersuchung der betroffenen lokalen Bevölkerung festzulegen.

Bei der Bewertung der Ergebnisse sollten eine nichtberufliche Exposition gegenüber dem Lösungsmittel (z. B. durch Verwendung von lösungsmittelhaltigen Verbraucherprodukten oder absichtliches Einatmen) und eine Exposition gegenüber Chemikalien, die zu denselben Metaboliten führen (z. B. einige Lebensmittelzusatzstoffe), sorgfältig ausgeschlossen werden. Falls eine große Lücke zwischen der Intensität der Dampfexposition und den Ergebnissen der biologischen Überwachung besteht, kann der Unterschied auf die Möglichkeit einer Hautabsorption hinweisen. Zigarettenrauchen unterdrückt den Metabolismus einiger Lösungsmittel (z. B. Toluol), während eine akute Ethanolaufnahme den Methanolmetabolismus kompetitiv unterdrücken kann.

 

Zurück

Lesen Sie mehr 9739 mal Zuletzt geändert am Donnerstag, den 13. Oktober 2011 um 20:21 Uhr

HAFTUNGSAUSSCHLUSS: Die ILO übernimmt keine Verantwortung für auf diesem Webportal präsentierte Inhalte, die in einer anderen Sprache als Englisch präsentiert werden, der Sprache, die für die Erstproduktion und Peer-Review von Originalinhalten verwendet wird. Bestimmte Statistiken wurden seitdem nicht aktualisiert die Produktion der 4. Auflage der Encyclopaedia (1998)."

Inhalte

Referenzen zur biologischen Überwachung

Alcini, D, M Maroni, A Colombi, D Xaiz und V Foà. 1988. Bewertung einer standardisierten europäischen Methode zur Bestimmung der Cholinesterase-Aktivität in Plasma und Erythrozyten. Med Lavoro 79(1):42-53.

Alessio, L, A Berlin und V Foà. 1987. Andere Faktoren als die Exposition auf das Niveau biologischer Indikatoren beeinflussen. In Occupational and Environmental Chemical Hazards, herausgegeben von V Foà, FA Emmett, M ​​Maroni und A Colombi. Chichester: Wiley.

Alessio, L, L Apostoli, L Minoia und E Sabbioni. 1992. Von Makro- zu Mikrodosen: Referenzwerte für toxische Metalle. In Science of the Total Environment, herausgegeben von L Alessio, L Apostoli, L Minoia und E Sabbioni. New York: Elsevier-Wissenschaft.

Amerikanische Konferenz staatlicher Industriehygieniker (ACGIH). 1997. 1996-1997 Schwellenwerte für chemische Substanzen und physikalische Einwirkungen und biologische Expositionsindizes. Cincinnati, Ohio: ACGIH.

—. 1995. 1995-1996 Schwellenwerte für chemische Substanzen und physikalische Einwirkungen und biologische Expositionsindizes. Cincinnati, Ohio: ACGIH.

Augustinsson, KB. 1955. Die normale Schwankung der Cholinesterase-Aktivität im menschlichen Blut. Acta Physiol Scand 35:40-52.

Barquet, A, C Morgade und CD Pfaffenberger. 1981. Bestimmung von chlororganischen Pestiziden und Metaboliten in Trinkwasser, menschlichem Blut, Serum und Fettgewebe. J. Toxicol Environ Health 7:469-479.

Berlin, A, RE Yodaiken und BA Henman. 1984. Bewertung von Giftstoffen am Arbeitsplatz. Rollen der Umgebungs- und biologischen Überwachung. Proceedings of the International Seminar, das vom 8. bis 12. Dezember in Luxemburg stattfand. 1980. Lancaster, Großbritannien: Martinus Nijhoff.

Bernard, A. und R. Lauwerys. 1987. Allgemeine Grundsätze für die biologische Überwachung der Exposition gegenüber Chemikalien. In Biological Monitoring of Exposure to Chemicals: Organic Compounds, herausgegeben von MH Ho und KH Dillon. New York: Wiley.

Brugnone, F, L Perbellini, E Gaffuri und P Apostoli. 1980. Biomonitoring der industriellen Lösungsmittelexposition der Alveolarluft von Arbeitern. Int Arch Occup Environ Health 47:245-261.

Bullock, DG, NJ Smith und TP Whitehead. 1986. Externe Qualitätsbewertung von Bleiproben im Blut. Clin. Chem. 32: 1884-1889.

Canossa, E, G. Angiuli, G. Garasto, A. Buzzoni und E. De Rosa. 1993. Dosisindikatoren bei Mancozeb-exponierten Landarbeitern. Med Lavoro 84(1):42-50.

Catenacci, G., F. Barbieri, M. Bersani, A. Ferioli, D. Cottica und M. Maroni. 1993. Biologische Überwachung der menschlichen Exposition gegenüber Atrazin. Toxicol Letters 69:217-222.

Chalermchaikit, T, LJ Felice und MJ Murphy. 1993. Gleichzeitige Bestimmung von acht gerinnungshemmenden Rodentiziden in Blutserum und Leber. J Anal Toxicol 17:56-61.

Colosio, C., F. Barbieri, M. Bersani, H. Schlitt und M. Maroni. 1993. Marker der beruflichen Exposition gegenüber Pentachlorphenol. B Environ Contam Tox 51:820-826.

Kommission der Europäischen Gemeinschaften (CEC). 1983. Biological Indicators for the Assessment of Human Exposure to Industrial Chemicals. In EUR 8676 EN, herausgegeben von L. Alessio, A. Berlin, R. Roi und M. Boni. Luxemburg: CEC.

—. 1984. Biological Indicators for the Assessment of Human Exposure to Industrial Chemicals. In EUR 8903 EN, herausgegeben von L. Alessio, A. Berlin, R. Roi und M. Boni. Luxemburg: CEC.

—. 1986. Biological Indicators for the Assessment of Human Exposure to Industrial Chemicals. In EUR 10704 EN, herausgegeben von L. Alessio, A. Berlin, R. Roi und M. Boni. Luxemburg: CEC.

—. 1987. Biological Indicators for the Assessment of Human Exposure to Industrial Chemicals. In EUR 11135 EN, herausgegeben von L. Alessio, A. Berlin, R. Roi und M. Boni. Luxemburg: CEC.

—. 1988a. Biologische Indikatoren zur Bewertung der Exposition des Menschen gegenüber Industriechemikalien. In EUR 11478 EN, herausgegeben von L. Alessio, A. Berlin, R. Roi und M. Boni. Luxemburg: CEC.

—. 1988b. Indikatoren zur Bewertung von Exposition und biologischen Wirkungen genotoxischer Chemikalien. EUR 11642 Luxemburg: CEC.

—. 1989. Biological Indicators for the Assessment of Human Exposure to Industrial Chemicals. In EUR 12174 EN, herausgegeben von L. Alessio, A. Berlin, R. Roi und M. Boni. Luxemburg: CEC.

Cranmer, M. 1970. Bestimmung von p-Nitrophenol in menschlichem Urin. B Environ Contam Tox 5:329-332.

Dale, WE, A. Curley und C. Cueto. 1966. Mit Hexan extrahierbare chlorierte Insektizide in menschlichem Blut. Leben Sci 5:47-54.

Dawson, JA, DF Heath, JA Rose, EM Thain und JB Ward. 1964. Die Ausscheidung des in vivo von 2-Isopropoxyphenyl-N-methylcarbamat abgeleiteten Phenols durch den Menschen. Bull WHO 30:127-134.

DeBernardis, MJ und WA Wargin. 1982. Hochleistungsflüssigkeitschromatographische Bestimmung von Carbaryl und 1-Naphtol in biologischen Flüssigkeiten. J. Chromatogr. 246:89-94.

Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG). 1996. Höchstkonzentrationen am Arbeitsplatz (MAK) und Biologische Toleranzwerte (CBAT) für Arbeitsstoffe. Bericht Nr.28.VCH. Weinheim, Deutschland: Kommission zur Untersuchung gesundheitsgefährdender chemischer Verbindungen im Arbeitsbereich.

—. 1994. MAK- und BAT-Werte-Liste 1994. Weinheim, Deutschland: VCH.

Dillon, HK und MH Ho. 1987. Biologische Überwachung der Exposition gegenüber Organophosphor-Pestiziden. In Biological Monitoring of Exposure to Chemicals: Organic Compounds, herausgegeben von HK Dillon und MH Ho. New York: Wiley.

Tuchmacher, WM. 1982. Ein Verfahren mit mehreren Rückständen zur Bestimmung und Bestätigung von Rückständen saurer Herbizide in menschlichem Urin. J Agricul Food Chem 30:227-231.

Eadsforth, Lebenslauf, PC Bragt und NJ van Sittert. 1988. Studien zur Dosis-Ausscheidung beim Menschen mit den pyrethroiden Insektiziden Cypermethrin und Alphacypermethrin: Relevanz für die biologische Überwachung. Xenobiotica 18: 603-614.

Ellman, GL, KD Courtney, V Andres und RM Featherstone. 1961. Eine neue und schnelle kolorimetrische Bestimmung der Acetylcholinesterase-Aktivität. Biochem Pharmacol. 7: 88-95.

Gauge, JC. 1967. Die Bedeutung von Messungen der Cholinesterase-Aktivität im Blut. Rest Off 18:159-167.

Gesundheits- und Sicherheitsbeauftragter (HSE). 1992. Biological Monitoring for Chemical Exposures in the Workplace. Leitlinie EH 56. London: HMSO.

Internationale Agentur für Krebsforschung (IARC). 1986. IARC Monographs On the Evaluation of Carcinogenic Risks to Humans – An Updating of (Selected) IARC Monographs from Volumes 1 to 42. Supplement 6: Genetic and related effects; Ergänzung 7: Gesamtbewertung der Kanzerogenität. Lyon: IARC.

—. 1987. Method for Detecting DNA Damage Agents in Humans: Applications in Cancer Epidemiology and Prevention. IARC Scientific Publications, Nr. 89, herausgegeben von H Bartsch, K Hemminki und IK O'Neill. Lyon: IARC.

—. 1992. Mechanismen der Karzinogenese bei der Risikoidentifikation. IARC Scientific Publications, Nr. 116, herausgegeben von H. Vainio. Lyon: IARC.

—. 1993. DNA-Addukte: Identifizierung und biologische Bedeutung. IARC Scientific Publications, Nr. 125, herausgegeben von K Hemminki. Lyon: IARC.

Kolmodin-Hedman, B., A. Swensson und M. Akerblom. 1982. Berufliche Exposition gegenüber einigen synthetischen Pyrethroiden (Permethrin und Fenvalerat). Arch Toxicol 50:27-33.

Kurttio, P, T Vartiainen und K Savolainen. 1990. Umwelt- und biologische Überwachung der Exposition gegenüber Ethylenbisdithiocarbamat-Fungiziden und Ethylenthioharnstoff. Br. J. Ind. Med. 47:203–206.

Lauwerys, R. und P. Hoet. 1993. Industrial Chemical Exposure: Guidelines for Biological Monitoring. Boca Raton: Lewis.

Gesetze, ERJ. 1991. Diagnose und Behandlung von Vergiftungen. In Handbook of Pesticide Toxicology, herausgegeben von WJJ Hayes und ERJ Laws. New York: Akademische Presse.

Lucas, AD, AD Jones, MH Goodrow und SG Saiz. 1993. Bestimmung von Atrazin-Metaboliten im menschlichen Urin: Entwicklung eines Expositions-Biomarkers. Chem. Res. Toxicol 6: 107-116.

Maroni, M, A Ferioli, A Fait und F Barbieri. 1992. Messa a punto del rischio tossicologico per l'uomo connesso alla produzione ed uso di antiparastitari. Zurück Oggi 4:72-133.

Reid, SJ und RR Watts. 1981. Eine Methode zur Bestimmung von Diaklylphosphatrückständen im Urin. J Analtoxin 5.

Richter, E. 1993. Organophosphorus Pesticides: A Multinational Epidemiological Study. Kopenhagen: Arbeitsschutzprogramm und WHO-Regionalbüro für Europa.

Shafik, MT, DE Bradway, HR Enos und AR Yobs. 1973a. Exposition des Menschen gegenüber phosphororganischen Pestiziden: Ein modifiziertes Verfahren zur gas-flüssig-chromatographischen Analyse der Alkylphosphat-Metaboliten im Urin. J. Agricul Food Chem. 21:625–629.

Shafik, MT, HC Sullivan und HR Enos. 1973b. Multirückstandsverfahren für Halogen- und Nitrophenole: Messungen der Exposition gegenüber biologisch abbaubaren Pestiziden, die diese Verbindungen als Metaboliten ergeben. J. Agricul Food Chem. 21:295–298.

Sommer, LA. 1980. Die Bipyridylium-Herbizide. London: Akademische Presse.

Tordoir, WF, M. Maroni und F. He. 1994. Gesundheitsüberwachung von Pestizidarbeitern: Ein Handbuch für Arbeitsmediziner. Toxikologie 91.

US-Amt für Technologiebewertung. 1990. Genetische Überwachung und Screening am Arbeitsplatz. OTA-BA-455. Washington, DC: Druckerei der US-Regierung.

van Sittert, NJ und EP Dumas. 1990. Feldstudie über Exposition und gesundheitliche Auswirkungen eines Organophosphat-Pestizids zur Aufrechterhaltung der Registrierung auf den Philippinen. Med Lavoro 81:463-473.

van Sittert, NJ und WF Tordoir. 1987. Aldrin und Dieldrin. In Biological Indicators for the Assessment of Human Exposure to Industrial Chemicals, herausgegeben von L. Alessio, A. Berlin, M. Boni und R. Roi. Luxemburg: CEC.

Verberk, MM, DH Brouwer, EJ Brouer und DP Bruyzeel. 1990. Gesundheitliche Auswirkungen von Pestiziden in der Blumenzwiebelkultur in Holland. Med Lavoro 81(6):530-541.

Westgard, JO, PL Barry, MR Hunt und T Groth. 1981. Ein Shewhart-Diagramm mit mehreren Regeln zur Qualitätskontrolle in der klinischen Chemie. Clin. Chem. 27:493–501.

Weißkopf, TP. 1977. Qualitätskontrolle in der klinischen Chemie. New York: Wiley.

Weltgesundheitsorganisation (WHO). 1981. Externe Qualitätsbewertung von Gesundheitslaboratorien. EURO-Berichte und -Studien 36. Kopenhagen: WHO-Regionalbüro für Europa.

—. 1982a. Felduntersuchung zur Exposition gegenüber Pestiziden, Standardprotokoll. Dokumentieren. Nr. VBC/82.1 Genf: WHO.

—. 1982b. Empfohlene gesundheitsbasierte Grenzwerte für die berufliche Exposition gegenüber Pestiziden. Technische Berichtsreihe, Nr. 677. Genf: WER.

—. 1994. Richtlinien für die biologische Überwachung der Chemikalienexposition am Arbeitsplatz. Vol. 1. Genf: WER.